鈣離子熒光探針Fura 2-AM
規格：F015: 1 mg
F025: 50 μg×8
F025: 50 μg
供應商：上海索寶生物科技有限公司
產品特性
Fura 2是常用的檢測細胞內鈣離子濃度的熒光探針之一，Fura 2-AM(鈣離子熒光探針)需用無水DMSO(anhydrous DMSO)溶解。
Fura 2對Quin 2的熒光特性做了改進。1 μM Fura 2結合后的信號強度相當于30 μM的Quin 2結合后的信號強度。這樣就保證在實驗中可以使用比Quin 2的濃度低得多的Fura 2指示劑。Fura 2是一種使用廣泛的比率測量的鈣熒光指示劑。目前適用于Fura 2實驗的設備有很多，它特別適合于用數字成像顯微鏡來檢測。它比Indo 1更不易受到光褪色作用的影響。細胞形狀的改變有時候會影響340 nm和380 nm的熒光比率，比如，平滑肌收縮會同時引起這些波長的熒光信號強度的減小。另外，對于血管來說，340 nm的信號強度的增加會因為血管收縮而趨向于變小，而380 nm信號強度的減小會因為血管收縮而變大。Fura 2-AM是Fura 2的一種乙酰甲酯衍生物，通過培養，能夠輕易地負載到細胞中。
Fura 2可以和鈣離子(Ca2+)結合，結合鈣離子后在330-350 nm激發光下可以產生較強的熒光，而在380 nm激發光下則會導致熒光減弱。這樣就可以使用340 nm和380 nm這兩個熒光的比值來檢測細胞內的鈣離子濃度，可以消除不同細胞樣品間熒光探針裝載效率的差異，熒光探針的滲漏，細胞厚度差異等一些誤差因素。
Fura 2-AM是一種可以穿透細胞膜的熒光染料。Fura 2-AM的熒光比較弱，大激發波長為369 nm，大發射波長為478 nm，并且其熒光不會隨鈣離子濃度改變而改變。Fura 2-AM進入細胞后可以被細胞內的酯酶剪切形成Fura 2，從而被滯留在細胞內。Fura 2和鈣離子結合后，大激發波長為335 nm(大激發波長隨離子濃度的的不同而有所不同)，大發射波長為505nm。實際檢測時推薦使用的激發波長為340nm，發射波長為510 nm。如果做雙波長檢測，則推薦使用的激發波長為340 nm和380 nm。
操作說明 (for NG 108-15/ Neuronal Cell Line)*
試劑:
1 mM 的Fura 2-AM/DMSO (將1 mg 的Fura 2-AM 溶于 1 ml DMSO)
Hanks'balanced salt solution (HBSS)
HEPES buffer saline (20 mM HEPES, 115 mM NaCl, 5.4 mM KCl, 1.8 mM CaCl2, 0.8 mM MgCl2, 13.8 mM glucose, pH 7.4)
操作:
1. 用含有5%的胎牛血清的DMEM在玻璃底培養皿中培養細胞。
2. 將培養液換成1 mM的 dibutyl cAMP/DMEM，再培養細胞3-4天來誘導樹突。
3. 用HEPES buffer saline來稀釋1 mM 的Fura 2-AM DMSO溶液，制成1μM的Fura 2-AM working
solution。
4. 除去培養液，加入0.5 ml 的Fura 2-AM working solution。
5. 培養20分鐘，然后除去Fura 2-AM working solution。
6. 用HEPES buffer saline洗滌細胞一次，然后將細胞在HEPES buffer saline中培養1小時。
7. 將此細胞用于熒光鈣離子檢測。
8. 激發波長380 nm（游離鈣）和340 nm（結合鈣），發射波長510nm。
*標記的條件因細胞種類而異，在每次實驗前，請先確定佳條件。以上方法僅供參考。
染色實例1：
視網膜雙極細胞鈣離子濃度定標測定
（A）分離的視網膜雙極細胞預孵育2 ug/ml 的Fura-2 AM 20分鐘，且存在有ionomycin時，分別在無鈣、10 mM游離鈣離子以及用無鈣液洗脫的溶液中的圖像；（B）雙極細胞不同區域（1～3）的胞內鈣離子濃度變化的連續記錄圖。10 mM游離鈣離子溶液可使雙極細胞胞體和軸突終末鈣離子濃度顯著升高，并可部分洗脫。
圖像處理軟件SimplePCI6，CCD Hamamatsu ORCA-ER，顯微鏡Olympus倒置顯微鏡IX70，40倍油鏡。
染色實例2：
加載了Fura 2的新鮮分離的大鼠肝臟細胞PE刺激后出現規則胞漿鈣振蕩，上圖為細胞明場圖和不同時間點（min）的比例成像（F340/F380）,下圖為影響Fura 2熒光強度的比例（F340/F380）隨時間的變化。成像系統：Photon Technology International Inc.,顯微鏡Nikon TE2000U，CCD相機QuantEM512S，軟件ERP。
染色實例3：
左圖（Control）為施加高鉀（50 mM）前，急性分離的大鼠背根神經節（DRG）細胞胞內鈣離子濃度較低，施加50 mM KCl 5s后，DRG細胞內鈣離子濃度快速升高（右圖）
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